Los petauros del azúcar son marsupiales nocturnos de pequeño tamaño que habitan en árboles, nativos de Australia, Indonesia y Nueva Guinea. Se han convertido en mascotas populares. Su nombre deriva de la delgada membrana de tejido (el patagio) que se extiende desde las muñecas de las extremidades delanteras hasta los tobillos de las extremidades posteriores, lo que les permite deslizarse de un árbol a otro en la naturaleza. En los Estados Unidos, también se les conoce como “osos de azúcar”. Los petauros del azúcar salvajes viven en grandes grupos sociales llamados colonias y les va mejor en cautiverio cuando se alojan en parejas o grupos pequeños. Son marsupiales omnívoros con fermentación en el intestino posterior, que dependen de la fermentación En estado silvestre, se alimentan de una variedad de plantas, savia e invertebrados. Esta dieta es difícil de replicar en cautiverio, lo que predispone a los planeadores cautivos a deficiencias nutricionales y enfermedades.
Los petauros del azúcar (Petaurus breviceps) son nocturnos de pequeño tamaño, originarios de Australia, Indonesia y Nueva Guinea. Habitan en bosques de eucaliptos y acacias. Pertenecen a la familia Petauridae.
Perlas y trampas
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Poseen una membrana para planear (patagio) que se extiende desde la muñeca de la extremidad anterior hasta el tobillo de la extremidad posterior, lo que les permite planear hasta 50 metros y buscar alimento usando menos energía que si tuvieran que trepar.
Los petauros del azúcar utilizan sus colas como timones estabilizadores para cambiar de dirección con facilidad. El segundo y tercer dedo de sus patas traseras están fusionados para formar un solo dedo con dos uñas, que usan como peine para acicalar y limpiar su pelaje.
Las hembras son poliéstricas estacionales y tienen dos vaginas laterales, un canal vaginal central, dos úteros, dos cuellos uterinos y una marsupio con cuatro pezones. A menudo paren dos crías. Después de 16 días de gestación, las crías (cachorros), cada una con un peso de solo 0,2 g, migran a la bolsa de la madre para desarrollarse aún más (consulte la ); abandonan la bolsa después de 50 a 74 días.
Cortesía del Dr. Laurie Hess.
Los cachorros permanecen en el nido hasta que tienen aproximadamente 100 días de edad, momento en el que son destetados. Permanece con la colonia hasta que se ven obligados a abandonarla entre los 7 y 10 meses de edad.
Los machos de los petauros del azúcar tienen un pene bifurcado (para que coincida con la vagina doble de la hembra; consulte la ) y un escroto colgante que contiene dos testículos. Los machos orinan desde el extremo proximal del pene, no desde el extremo bifurcado.
Cortesía del Dr. Laurie Hess.
Tanto machos como hembras presentan glándulas de olor paracloacales adyacentes al ano (la abertura cloacal o apertura común de los tractos urinario, reproductivo y gastrointestinal), con las cuales marcan territorio y se reconocen entre sí. Los machos también tienen glándulas de olor frontales en la frente, así como glándulas en la garganta y el pecho. El pelaje escaso y la secreción oleosa son normales en las glándulas frontal y esternal de los machos pospuberales. Estas glándulas dan a ambos sexos un olor de almizcle.
Los petauros del azúcar tienen ojos grandes, protuberantes y muy espaciados, lo que les da un campo de visión amplio, especialmente en la noche. Sus orejas se mueven de forma independiente y son muy sensibles al sonido. Tienen también un gran sentido del olfato para localizar el alimento, detectar a los depredadores y reconocer tanto su territorio como a sus compañeros de colonia.
Los petauros silvestres tienen un pelaje gris y una raya negra central dorsal en la cabeza. Los petauros domesticados pueden parecer similares al silvestre, pero tienen variaciones del color. Las variaciones de color incluyen gris clásico o estándar, albino, cremoso, leucístico, belleza negra, platino, rojo cedro, rojo caoba, león y caramelo, así como muchos otros. Algunas líneas de mosaico de petauros del azúcar pueden producir machos infértiles (1).
Los petauros del azúcar son polígamos y territoriales, y viven en colonias de 5 a 12 individuos, que generalmente consisten en un macho dominante, un par de machos subordinados y varias hembras. Durante el día y entre los viajes de búsqueda de alimento por la noche, duermen en huecos de los árboles. Toleran una amplia gama de temperaturas ambientales y entran en letargo para conservar energía en condiciones muy frías.
Los petauros del azúcar son omnívoros y se alimentan de exudados ricos en azúcar de plantas e insectos (savia, goma, néctar, maná, polen) y de invertebrados como fuente de proteínas. Son fermentadores de intestino grueso y tienen un ciego bien desarrollado que usa la fermentación bacteriana para romper los complejos de polisacáridos contenidos en la goma. El resto de su tracto gastrointestinal es más similar al de los carnívoros.
Consulte también la tabla .
Selección de datos fisiológicos del petauro del azúcara
Esperanza de vida | 4-15 años |
Peso corporal adulto | Hembras: 80-135 g Machos: 100-160 g |
Frecuencia respiratoria | 16-40 respiraciones/min |
Frecuencia cardíaca | 200-300 lpm |
Temperatura corporal | 36,3 °C |
Zona termoneutral | 27 °C–31 °C |
Consumo de alimentosb | 15–20 % de peso corporal/día |
Dentición | Diprotodonte (tiene dos incisivos) |
Fórmula dentaria | 2 (I 3/2 C 1/0 P 3/3 M 4/4) |
La pubertad | Hembras: 8–12 meses Machos: 12-14 meses |
Ciclo estral | 29 días |
Periodo de gestación | 15-17 días |
Tamaño de la camadac | 2 (81 %) |
Peso al nacimiento | 0,2 g |
Salida de la bolsa | Aprox. 60 días (50 a 74 días) |
Destete | Aprox. 100 días (85 a 120 días) |
a Salvo que se indique lo contrario, los datos proceden de una tabla en Brust DM, Mans C. Sugar gliders. In: Carpenter JW, Harms CA, eds. Carpenter’s Exotic Animal Formulary. 6th ed. Elsevier; 2023:496-510, supported by the following sources:
bLos datos de consumo de alimentos son de Brust DM. Sugar Gliders: A Complete Veterinary Care Guide. Veterinary Interactive Publications; 2009. cLos datos sobre el tamaño de la camada son de Suckling GC. Population ecology of the sugar glider, Petaurus breviceps, in a system of fragmented habitats. Aust Wildl Res. 1984;11(1):49-75. doi:10.1071/WR9840049 | |
Exploración física de los petauros del azúcar
Si es posible, la evaluación de un petauro del azúcar debe comenzar con la observación del animal en su jaula para valorar la postura, coordinación, frecuencia y esfuerzo respiratorio, así como su comportamiento. Para un examen clínico completo, puede ser necesario anestesiar al paciente con isoflurano mediante mascarilla facial si se encuentra muy estresado o muerde. Los pacientes más dóciles pueden examinarse mientras se envuelven en una toalla pequeña y sostienen en la palma de la mano. No se recomienda sujetarlos por el pescuezo. Los petauros dentro de bolsas de tela o pouches pueden exponerse parcialmente, una parte del cuerpo a la vez, para su examen.
Dado que los petauros son nocturnos, los exámenes clínicos deben programarse a primera hora del día, cuando los animales están menos activos.
Si está anestesiado, se puede registrar la temperatura cloacal, la frecuencia cardiaca y la frecuencia respiratoria. Se pueden evaluar el corazón y los pulmones con un fonendoscopio pediátrico. No se debe anestesiar a las hembras con cachorros en la bolsa. Si es necesaria la anestesia, primero se deben retirar los cachorros que están en la bolsa pero no se encuentren adheridos al pezón (1).
Los cachorros que se retiran de la bolsa cuando la madre debe ser anestesiada deben mantenerse en una bolsa de tela dentro de una incubadora cálida a aproximadamente de 28 a 32 °C, manteniendo a los cachorros sin pelaje a una temperatura superior que a los que ya tienen pelaje. Si se separan de la madre durante largos períodos de tiempo, los cachorros requieren alimentación cada 2 a 4 horas y se les debe ofrecer un sustituto de leche que sea bajo en lactosa (por ejemplo, un sustituto de leche canina diluido o un producto formulado en Australia específicamente para petauros del azúcar jóvenes) (2).
Se debe examinar el pelaje y la piel del petauro en busca de ectoparásitos, lesiones traumáticas, pérdida de pelo y grado de hidratación; la cavidad oral para identificar dientes fracturados, abscesos dentales o acumulación de sarro; y los ojos y oídos para detectar cualquier anomalía. Se debe examinar el área cloacal y extruir el pene de los machos. Se debe palpar el abdomen y examinar la bolsa de las hembras. Se deben palpar las articulaciones principales y examinar los dedos y las uñas de los pies en busca de traumatismos. Se debe evaluar el patagio en busca de heridas, evidencia de traumatismo previo y contractura.
Técnicas de diagnóstico y tratamiento para petauros del azúcar
Si un petauro del azúcar está deshidratado, se pueden administrar fluidos isotónicos (hasta un 10 % del peso corporal) por vía subcutánea en la región del hombro sobre la línea media dorsal. Se debe tener cuidado de no inducir edema en el patagio, ya que esto puede resultar doloroso, y la absorción de líquidos en esta zona puede ser muy lenta.
Los fluidos también pueden administrarse por vía intraósea en el fémur proximal o en la tibia. Las inyecciones SC pueden aplicarse en la misma zona donde se administran los fluidos subcutáneos. Las inyecciones IM pueden aplicarse en los músculos epaxiales del cuello y del tórax dorsal, o en el músculo del muslo craneal. Las inyecciones IV son muy difíciles de realizar, pero pueden hacerse en las venas cefálicas o safenas laterales de un petauro anestesiado.
Las radiografías generalmente requieren que el planeador esté anestesiado para lograr un posicionamiento adecuado. Las enfermedades pulmonares son más fáciles de detectar con radiografías. La ecografía se puede usar para evaluar la presencia de líquido libre en el tórax o el abdomen. Se pueden tomar muestras de las heces fácilmente y revisar anualmente en busca de parásitos mediante flotación fecal y frotis directo; los animales con diarrea deben someterse a cultivo de heces y pruebas de sensibilidad antimicrobiana apropiadas.
Recogida de sangre, hematología y bioquímica de los petauros del azúcar
Los rangos de referencia para los petauros del azúcar se presentan en la tabla . La restricción química, necesaria para permitir la obtención de sangre, se realiza de manera más segura con isoflurano u oxígeno administrado mediante mascarilla y circuito anestésico tipo T.
Valores hematológicos y bioquímicos seleccionados para los petauros del azúcara
Parámetro | Intervalo normalb |
|---|---|
Hematología | |
Hemoglobina (g/dL) | 16,3 ± 1,9 (15,8–16,9) |
Hematocrito (%) | 53 ± 6 (51–54) |
RBC (106/mL) | 8,6 ± 1,0 (8,3–8,8) |
Concentración media de hemoglobina corpuscular (g/dL): | 30,8 ± 0,7 (30,6–31,0) |
Hemoglobina corpuscular media (pg): | 19,1 ± 1,1 (18,8–19,4) |
Volumen corpuscular medio (fL) | 64,1 ± 14,8 (60,2–68,1) |
Glóbulos blancos (103/mL) | 7,4 ± 7,7 (5,5–9,3) |
Neutrófilos (103/mL) | 1,8 ± 1,5 (1,5–2,2) |
Linfocitos (103/mL) | 5,4 ± 7,0 (3,7–7,2) |
Monocitos (103/mL) | 0,1 ± 0,1 (0,1–0,2) |
Eosinófilos (103/mL) | 0,2 ± 0,2 (0,1–0,3) |
Basófilos (103/mL) | 0,0 ± 0,0 (0,0–0,1) |
Plaquetas (103/mL) | 346 ± 201 (292–400) |
Bioquímica | |
ALT (U/l) | 117 ± 28 (89–137) |
AST (U/l) | 77 ± 71 (54–100) |
ALP (U/l) | 102 ± 57 (89–137) |
Amilasa (U/L) | 2,734 ± 890 (2,117–3,351) |
Bilirrubina, total (mg/dL) | 0,4 ± 1,3 (0,1–0,7) |
Calcio (mg/dL) | 8,7 ± 0,8 (8.5–8.9) |
CK (U/l) | 1,359 ± 972 (1,081–1,637) |
Creatinina (mg/dl) | 0,5 ± 0,3 (0,5–0,6) |
Nitrógeno ureico (mg/dL) | 17 ± 8 (15–18) |
Glucosa (mg/dL) | 162 ± 45 (153–172) |
Fósforo (mg/dL) | 5,2 ± 3,6 (4,4–6,1) |
Potasio (mmol/L) | 5,1 ± 2,3 (4,6–5,5) |
Magnesio (mmol/L) | 0,95 ± 0,25 (0,8–1,05) |
Sodio (mmol/L) | 141 ± 11 (139–143) |
Colesterol (mg/dL) | 118 ± 28 (112–124) |
Proteínas totales (g/dL) | 6,9 ± 0,7 (6,7–7,0) |
Albúmina (g/dL) | 3,9 ± 0,4 (3,1–4,6) |
Globulina (g/dL) | 3,0 ± 0,5 (2,9–3,1) |
Abreviaturas: ALP, fosfatasa alcalina; ALT, alanina aminotransferasa; AST, aspartato aminotransferasa. a Los datos son de Brust DM, Mans C. Sugar gliders. In: Carpenter JW, Harms CA, eds. Carpenter’s Exotic Animal Formulary. 6th ed. Elsevier; 2023:496-510. b Los valores reportados representan la media ± desviación estándar, con rangos que reflejan intervalos de confianza del 95 % tras eliminar valores atípicos. Estadísticamente, el 90 % de la población debería presentar valores dentro de estos límites. | |
Para ayudar en el diagnóstico clínico de enfermedades en petauros del azúcar, se pueden obtener muestras de sangre de la vena cava craneal, la vena yugular, la arteria tibial medial o la vena lateral de la cola. Se pueden recolectar volúmenes de sangre de hasta el 1 % del peso corporal; normalmente se obtienen entre 0,5 y 1 mL de sangre. Se deben recolectar volúmenes menores en animales enfermos o debilitados. A menudo, se requiere anestesia general para facilitar la obtención de la muestra.
Se puede acceder a la vena cava craneal de un petauro del azúcar con una aguja de calibre 27 o 25 en una jeringa de insulina, insertada en la entrada torácica justo lateral al manubrio, con la aguja dirigida en un ángulo de 30° desde la línea media hacia la extremidad posterior opuesta. La vena cava no se visualiza directamente durante la venopunción; se accede de manera ciega utilizando el manubrio como referencia palpable. Las complicaciones pueden incluir hematomas, laceración de la vena cava craneal o perforación del corazón.
La vena yugular de un petauro del azúcar puede visualizarse si se recorta el pelaje y se fuerza el llenado de la vena aplicando una presión digital suave en la entrada torácica. La vena yugular se encuentra a medio camino entre la articulación del hombro y la rama mandibular. Para facilitar la venopunción, se puede doblar la aguja en su base.
La arteria tibial medial, que corre muy superficial justo distal y medial a la articulación de la rodilla, es más fácil de acceder y puede muestrearse con una aguja de calibre 27 o 25 en una jeringa de 0,3 a 1 mL. Es necesario aplicar presión después de la extracción para evitar la formación de hematomas.
La vena lateral de la cola tiene el tamaño más adecuado para punción cutánea y recolección de gotas en tubos capilares. Se pueden obtener también pequeñas muestras de sangre (0,25 mL) de las venas cefálica, safena lateral, femoral y coccígea ventral con una aguja de calibre 27 en una jeringa de insulina.
Anestesia y cirugía en los petauros del azúcar
La anestesia en los petauros del azúcar debe abordarse de la misma forma que en los pequeños mamíferos. Lo ideal es que los petauros estén en ayunas durante 3 a 4 horas antes de la cirugía (3). Se pueden utilizar analgésicos preoperatorios, sedantes para reducir el estrés preoperatorio y anestésicos locales y gaseosos.
Se debe mantener a los petauros calientes durante la cirugía para asegurar una recuperación rápida. Los petauros que se someten a cirugías que duran >1 hora o que requieren acceso intraabdominal deben recibir fluidos por vía intraósea (en el fémur o la tibia) durante todo el procedimiento si el acceso intravenoso es imposible debido al pequeño tamaño de las venas. Los procedimientos más cortos y simples pueden requerir solo líquidos SC administrados con cualquier premedicación antes de la anestesia y la cirugía. Las dosis de reversión y de emergencia del fármaco deben calcularse antes de la inducción.
Los medicamentos preanestésicos de uso común incluyen midazolam y butorfanol o buprenorfina. También se puede administrar atropina o glicopirrolato; sin embargo, pueden afectar negativamente la motilidad gastrointestinal y aumentar la viscosidad de la saliva y las secreciones de las vías respiratorias (4).
Se deben usar inyecciones anestésicas locales de lidocaína o bupivacaína para infiltrar el sitio de la incisión para minimizar el riesgo de automutilación postoperatoria, común en los petauros del azúcar (5, 6). Para facilitar la castración, estos fármacos pueden diluirse con agua estéril e infundirse en la base del tallo escrotal más cercano al abdomen, mientras se administra una baja concentración de anestésico gaseoso.
Perlas y trampas
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Tanto el isoflurano como el sevoflurano pueden administrarse mediante una mascarilla facial pequeña o mediante una mascarilla grande utilizada como cámara de inducción. Durante la cirugía, los petauros pueden mantenerse bajo anestesia gaseosa con mascarilla o intubados con un tubo endotraqueal Cook de 1 mm con estilete.
Se debe monitorear cuidadosamente la pérdida de sangre durante la cirugía; el uso de radiocirugía puede ayudar a minimizar el sangrado. Los petauros del azúcar tienden a masticar las incisiones después de la cirugía, por lo que se deben usar suturas subcuticulares y pegamento cutáneo para cerrar las incisiones cutáneas. Se deben administrar analgésicos antes de la cirugía para minimizar el dolor durante la cirugía e inmediatamente después de esta.
Perlas y trampas
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Los petauros deben recuperarse de la cirugía en incubadoras de temperatura controlada. Se debe ofrecer alimento inmediatamente después de la recuperación de la anestesia, a menos que la cirugía realizada contraindique la alimentación postoperatoria. La alimentación también puede ayudar a distraer al paciente y evitar que manipule sus incisiones durante la recuperación. Se recomienda usar collares isabelinos después de la cirugía para reducir el riesgo de automutilación.
Para prevenir la reproducción y disminuir la frustración sexual, en los machos de petauro del azúcar se realizan comúnmente orquiectomía y ablación escrotal mediante el siguiente procedimiento:
Se recorta el pelo alrededor de la base del saco y tallo escrotal, y se limpia la piel.
Se administra un anestésico local en la base del tallo.
Con el petauro bajo anestesia gaseosa, se realiza la incisión sobre el tallo escrotal, aproximadamente a entre 2 y 3 mm de la pared corporal.
Los cordones espermáticos se exponen mediante disección roma y se pinzan y ligan con sutura de polidioxanona 5-0 o se cortan y cauterizan con radiocirugía.
Se extirpa el saco escrotal junto con los testículos y el cordón espermático distal, y el tallo ligado puede suturarse a la fascia de la pared abdominal para prevenir hernias.
La piel se cierra con pegamento tisular.
Se han descrito otras técnicas de orquiectomía/ablación escrotal utilizando láser de dióxido de carbono (7), una pluma de electrocirugía (8) o un dispositivo de fusión de tejidos como LigaSure (9). Estos métodos a menudo implican menos tiempo anestésico y quirúrgico y deben usarse si están disponibles.
La ovariohisterectomía estándar en los petauros del azúcar no se realiza de forma rutinaria debido a la posición interna de los órganos reproductores femeninos, que son de difícil acceso y están por debajo del marsupio. El procedimiento se lleva a cabo de la siguiente manera:
El área alrededor de la bolsa se recorta y se frota de manera rutinaria.
Se hace una incisión de 1 a 2 cm paramediana a la bolsa.
La línea alba se diseca y se hace una incisión roma, y la vejiga se exterioriza desde la incisión para revelar los ovarios por debajo.
Se ligan las arterias ováricas, así como el útero proximalmente a los conductos vaginales laterales, en el nivel del cuello uterino.
Después de la resección de ambos ovarios y úteros, se cierra la línea media y la piel se sutura con puntos subcuticulares y adhesivo tisular.
La amputación distal del pene es otra cirugía común en petauros del azúcar. Los machos sexualmente frustrados a veces se automutilan el extremo distal del pene o desarrollan parafimosis. Dado que los machos orinan únicamente desde el extremo proximal, el segmento distal bifurcado puede amputarse de manera segura.
También podría ser necesaria la cirugía de reparación del patagio en petauros del azúcar. Las heridas pequeñas pueden cicatrizar por segunda intención; sin embargo, las heridas mayores podrían requerir cierre primario, como ocurre en otras especies. Se debe informar a los propietarios que el daño al patagio puede provocar contractura y, potencialmente, disminuir la movilidad (1).
Otras cirugías que se realizan en los petauros del azúcar incluyen la cistotomía para extirpar los urolitos; la uretrostomía para aliviar la obstrucción del tracto urinario de los urolitos en los machos; la amputación de la cola, los dedos o las extremidades en casos de traumatismo, lesión por constricción o automutilación grave; y extirpación quirúrgica de las glándulas paracloacales impactadas.
El procedimiento para la extracción de glándulas paracloacales impactadas es el siguiente:
Se infiltra la piel sobre las glándulas con un pequeño volumen de anestésico local y se realiza una incisión.
La glándula se diseca cuidadosamente y se extrae sin romperla.
El vaso sanguíneo que irriga la glándula se liga con sutura de polidioxanona 5-0 o 6-0, o se corta y cauteriza mediante radiocirugía.
La piel se cierra con pegamento tisular.
Nutrición y alojamiento de los petauros del azúcar
Los petauros del azúcar deben mantenerse como un grupo con un macho y varias hembras. Si se produce la reproducción, las crías deben retirarse poco después del destete para evitar intentos violentos de dispersarlas. Si se alojan solos, los petauros del azúcar necesitan una cantidad sustancial de atención y enriquecimiento para minimizar el estrés y la automutilación.
Debido a que los petauros del azúcar son arborícolas (viven en los árboles), requieren una gran jaula de alambre para trepar por la noche. Se debe evitar el uso de jaulas de alambre galvanizado debido al riesgo de toxicidad por metales pesados si los planeadores mordisquean el alambre (10). También se debe tener precaución al utilizar acero inoxidable recubierto de PVC, ya que existen reportes anecdóticos de toxicidad en planeadores que han mordido los barrotes de la jaula (1).
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Se debe proporcionar una jaula lo más grande posible, mínimo de 90 × 60 × 90 cm para los petauros del azúcar. Para evitar que los pies y las cabezas de los petauros queden atrapados, las barras no deben estar espaciadas a más de 1,25 cm de distancia. Se deben evitar las jaulas que contengan barras verticales, porque no facilitan la escalada.
Se debe proporcionar una caja nido de madera (hecha para aves) o una bolsa de tela colocada en lo alto de la jaula para que puedan esconderse y dormir. Las jaulas deben contener numerosas ramas (disponibles comercialmente como jaulas de pájaros) y estantes horizontales para promover la escalada. Los columpios y los juguetes para mordisquear hechos para las aves son ideales para los petauros. Se deben proporcionar ruedas de ejercicio con interiores lisos (para evitar que los dedos queden atrapados) para la estimulación física y mental.
El fondo de las jaulas de los petauros de azúcar se puede cubrir con papel de periódico u otros productos de papel reciclado que no son tóxicos si se ingieren. Se deben proporcionar varios comederos y bebederos por toda la jaula, con áreas designadas para comer, beber, hacer ejercicio y esconderse.
Las cajas nido, los refugios de tela, los comederos y bebederos, y la cama en las jaulas de los petauros de azúcar deben limpiarse regularmente. Los refugios de tela deben inspeccionarse por si presentan hilos sueltos y reemplazarse según sea necesario para prevenir lesiones o la ingestión de material.
Existen varias formulaciones comerciales y recetas de dietas caseras para petauros de azúcar; hasta la fecha, ninguna dieta estudiada ha demostrado ser ideal para los petauros en cautiverio. Una dieta recomendada incluye insectos enriquecidos con calcio (grillos, gusanos de la harina, gusanos de cera, cucarachas, polillas) para promover la salud dental, así como un sustituto diario de néctar/savia (por ejemplo, fructosa/sacarosa/glucosa, jarabe de arce o miel diluida al 10 % con agua) (11).
El néctar debe representar aproximadamente el 50 % de la dieta de un petauro del azúcar. Varios sustitutos del néctar están disponibles comercialmente, incluidos los suplementos de néctar formulados específicamente para petauros, los que contienen polvo de goma arábiga y las dietas de néctar destinadas a los loris. Las fuentes de proteínas distintas de los insectos incluyen huevos, carne magra, ratones recién nacidos y dietas comerciales granuladas formuladas para petauros de azúcar.
Las formulaciones comerciales peletizadas o las mezclas caseras de insectívoros u omnívoros deben proporcionarse además de los alimentos vivos, y los insectos y los alimentos granulados representan casi el 50 % de la dieta total de los petauros de azúcar. Algunas directrices recomiendan que hasta el 75 % de la dieta consista en alimentos comerciales granulados formulados específicamente para petauros del azúcar (1). Sin embargo, los estudios sobre las formulaciones comerciales disponibles son limitados; podrían no proporcionar una nutrición adecuada y podrían presentar desequilibrios de minerales y vitaminas (12).
Las frutas, nueces y verduras deben ofrecerse a los petauros del azúcar con moderación (<10 % del total de la dieta), porque muchas de ellas carecen de vitaminas, minerales y proteínas esenciales, y contienen principalmente agua. Debido a que las frutas contienen más azúcar y carecen de calcio y proteínas, grandes cantidades de fruta pueden predisponer a los petauros del azúcar a la enfermedad periodontal y la deficiencia nutricional.
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Antes de la disponibilidad de formulaciones comerciales en pellets para petauros del azúcar, se alimentaba con éxito una fórmula casera llamada dieta de Leadbeater cuando se ofrecía además de insectos, frutas y verduras. La mezcla contiene 150 mL de agua tibia, 150 mL de miel, un huevo duro (con cáscara), una cucharadita de suplemento multivitamínico/mineral y 25 g de cereal infantil seco de alto contenido proteico (12).
Como alternativa a la dieta casera de Leadbeater, existe un suplemento comercial en polvo de alto contenido proteico formulado para petauros del azúcar en Australia, que se mezcla con agua antes de administrarse. Además, se debe espolvorear diariamente un suplemento multivitamínico y mineral con calcio si no se proporcionan con la dieta.
Independientemente de la dieta, los alimentos deben ofrecerse por la noche, cuando los petauros del azúcar están activos, sobre una plataforma elevada, ya que los petauros se sienten más seguros al comer en altura, como lo hacen en los árboles en estado salvaje.
Los petauros del azúcar son generalmente robustos en cautiverio, si se siguen las prácticas de cría adecuadas. Sin embargo, las deficiencias nutricionales, especialmente de calcio y proteínas, son comunes en los petauros cautivos que se alimentan de manera inadecuada, y pueden conducir a afecciones graves como la enfermedad ósea metabólica.
La obesidad es común en los petauros que son alimentados con cantidades excesivas de golosinas con alto contenido de grasa y proteínas y no se les brinda la oportunidad de hacer ejercicio.
La enfermedad de almacenamiento de hierro, en la que el exceso de hierro en la dieta se acumula en el hígado (hemocromatosis), el bazo y otros tejidos, se ha reportado en petauros cautivos y podría estar asociada con la adaptación evolutiva de los petauros salvajes para extraer hierro limitado de sus dietas naturales (1, 12, 13, 14). Los cambios tóxicos hepatocelulares y la cirrosis debida al depósito de hierro pueden conducir a la muerte, a menos que la enfermedad se detecte y trate pronto con quelantes y un tratamiento de soporte.
Conceptos clave
Los petauros del azúcar son marsupiales cuyas crías completan su desarrollo en el marsupio materno.
Los petauros del azúcar tienen estructuras anatómicas únicas, como vaginas, úteros y cuellos uterinos dobles en las hembras; un pene bifurcado en los machos; y numerosas glándulas odoríferas, incluidas las glándulas paracloacales.
Son omnívoros fermentadores del intestino grueso, que consumen una variedad de plantas, insectos y savia/goma de mascar.
Para más información
Johnson-Delaney, CA. Sugar gliders. In: Quesenberry KE, Orcutt CJ, Mans C, Carpenter JW, eds. Ferrets, Rabbits and Rodents: Clinical Medicine and Surgery. 4th ed. Elsevier; 2021:385-400.
Brust DM, Mans C. Sugar gliders. In: Carpenter JW, Harms CA, eds. Carpenter’s Exotic Animal Formulary. 6th ed. Elsevier; 2023:496-510.
Vea también el contenido de los propietarios de mascotas sobre petauros del azúcar.
Referencias
Johnson-Delaney, CA. Sugar gliders. In: Quesenberry KE, Orcutt CJ, Mans C, Carpenter JW, eds. Ferrets, Rabbits and Rodents: Clinical Medicine and Surgery. 4th ed. Elsevier; 2021:385-400.
Burgess ME, Bishop CR. Reproductive physiology, normal neonatology, and neonatal disorders of sugar gliders. In: Lopate C, ed. Management of Pregnant and Neonatal Dogs, Cats, and Exotic Pets. Wiley-Blackwell; 2012:283-293.
Kubiak M. Sugar gliders. In Handbook of Exotic Pet Medicine. Kubiak M, ed. John Wiley & Sons; 2021:125-139.
Doss G, de Miguel Garcia C. African pygmy hedgehog (Atelerix albiventris) and sugar glider (Petaurus breviceps) sedation and anesthesia. Vet Clin North Am Exot Anim Pract. 2022;25(1):257-272. doi:10.1016/j.cvex.2021.08.005
Lawal FM, Adetunji A. A comparison of epidural anaesthesia with lignocaine, bupivacaine and a lignocaine-bupivacaine mixture in cats. J S Afr Vet Assoc. 2009;80(4):243-246. doi:10.4102/jsava.v80i4.220
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