Tripanossomíase em animais

A maior parte da transmissão pela mosca tsé-tsé é cíclica e começa quando o sangue de um animal infectado por tripanossoma é ingerido pela mosca. O tripanossoma altera sua camada superficial, multiplica-se no mosquito, depois altera sua camada superficial novamente e torna-se infeccioso. O T. brucei spp. migram dentro da mosca tsé-tsé, do intestino até as glândulas salivares; o ciclo de T. congolense termina na hipofaringe, e as glândulas salivares não são invadidas; todo o ciclo do T. vivax ocorre na probóscide. Portanto, a localização dentro da mosca tsé-tsé pode ser útil na identificação da espécie do parasita. A forma que infecta os animais na glândula salivar da mosca tsé-tsé é denominada forma metacíclica. O ciclo de vida da mosca tsé-tsé pode durar a partir de 1 semana no caso do T. vivax ou estender-se por algumas semanas no caso das espécies de T. brucei.

Moscas tsé-tsé (gênero Glossina) são encontradas apenas na África, aproximadamente entre as latitudes 15°N e 29°S. As três principais espécies habitam ambientes relativamente distintos: G. morsitans em geral é encontrado em países da savana, G. palpalis prefere áreas próximas a rios e lagos, e G. fusca vive em áreas florestais de alta altitude. Todas as 3 espécies transmitem tripanossomas e todas se alimentam de vários mamíferos.

A transmissão mecânica pode ocorrer por meio da picada de moscas tsé-tsé ou outras moscas hematófagas. No caso de T. vivax, Tabanus spp. e outras moscas hematófagas parecem ser os principais vetores mecânicos fora das áreas endêmicas da mosca tsé-tsé, como na América Central e do Sul. A transmissão mecânica exige apenas que os tripanossomas infecciosos que contêm sangue sejam transferidos por picada de um animal para outro.

As moscas tsé-tsé infectadas inoculam tripanossomas na pele de animais, onde os tripanossomas residem por poucos dias e causam inflamação localizada (cancros). Eles entram nos gânglios linfáticos e na linfa, depois na corrente sanguínea, onde se dividem rapidamente por fissão binária. Na infecção por T. congolense, os organismos se fixam às células endoteliais e se localizam nos capilares e nos vasos sanguíneos pequenos. As espécies T. brucei e T. vivax invadem os tecidos e causam danos ao tecido de vários órgãos.

A resposta imune é vigorosa, e os complexos imunes causam inflamação, o que contribui para a febre e outros sinais e lesões da doença. Os anticorpos contra as glicoproteínas da camada superficial matam os tripanossomas. No entanto, os tripanossomas apresentam uma grande família de genes que codificam glicoproteínas variáveis na camada superficial, as quais são alteradas em resposta ao anticorpo, escapando assim da imunidade. Essa variação antigênica resulta na persistência do organismo. A variação antigênica preveniu o desenvolvimento de uma vacina protetora e permite reinfecções quando animais são expostos a um novo tipo antigênico.

A gravidade da tripanossomíase varia com as espécies e a idade do animal infectado e com a espécie do tripanossoma envolvido. O período de incubação é em geral de 1 a 4 semanas. Os principais sinais clínicos são febre intermitente, anemia e perda de peso. Os bovinos em geral apresentam um curso crônico com alta mortalidade, especialmente se houver má nutrição ou outros fatores de estresse. Os ruminantes podem se recuperar gradualmente se o número de moscas tsé-tsé infectadas for baixo. Contudo, o estresse resulta em recidiva.

Achados de necropsia variam e não são específicos. Em casos agudos e fatais, petéquias extensas nas membranas serosas, especialmente na cavidade peritoneal, pode ocorrer. Em geral, os gânglios linfáticos e o baço apresentam tamanho aumentado. Em casos crônicos, observam-se gânglios linfáticos inchados, atrofia serosa da gordura e anemia.

• Avaliação clínica

• Sorologia

Trypanosoma vivax, esfregaço de sangue bovino

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Trypanosoma vivax, esfregaço de sangue de uma vaca infectada corado por Giemsa.

Cortesia da Dra. Corrie Brown.

O diagnóstico presumível de tripanossomíase baseia-se na identificação de um animal anêmico em más condições em uma área endêmica. A confirmação depende da demonstração de tripanossomas em esfregaços de sangue corados ou em preparações a fresco. O método rápido mais sensível é examinar um preparado a fresco da camada leucocitária de um tubo de PCV após centrifugação, procurando por parasitas móveis. Outras infecções que causam anemia e perda de peso, como babesiose, anaplasmose, teileriose e hemoncose, devem ser excluídas por meio do exame de um esfregaço de sangue corado.

Vários exames sorológicos mensuram os anticorpos contra tripanossomas, mas seu uso é mais adequado para triagem de rebanho e de área do que para o diagnóstico individual. Os testes rápidos de aglutinação para detectar antígenos específicos para espécies de tripanossomas circulantes no sangue periférico estão disponíveis para diagnóstico individual e do rebanho, embora sua confiabilidade continue variável. As técnicas moleculares para a detecção e diferenciação de tripanossomas foram desenvolvidas, mas não estão geralmente disponíveis para uso de rotina no campo.

• Quimioterápicos

• Redução das populações de mosca tsé-tsé

Vários medicamentos podem ser usados para o tratamento ( consulte a Tabela: Medicamentos comumente usados para tripanossomíase em animais domésticos) da tripanossomíase. A maioria apresenta um índice terapêutico restrito, o que torna essencial a administração correta da dose. A resistência a medicamentos ocorre e deve ser considerada em casos refratários.

O controle da tripanossomíase pode ser exercido em vários níveis, como a erradicação das moscas tsé-tsé e o uso de medicamentos profiláticos. As moscas tsé-tsé podem ser parcialmente controladas por pulverização e imersão frequentes dos animais, pulverização aérea e terrestre de inseticidas nas áreas de reprodução das moscas, o uso de telas e alvos impregnados com inseticida, poda e outros métodos de remoção de habitat. A técnica do inseto estéril (TIE) foi usada com sucesso no Zanzibar e pode ser usada em outras operações de controle de grandes áreas após a supressão das populações de tsé-tsé por inseticidas. Há um interesse internacional renovado na erradicação em grande escala da tsé-tsé por meio da Campanha Panafricana de Erradicação da Mosca Tsé-tsé e da Tripanossomíase (PATTEC) respaldada pela União Africana. Os animais podem receber medicamentos profilaticamente em áreas com alta população de tsé-tsé infectadas por tripanossomas. A resistência a medicamentos precisa ser cuidadosamente monitorada por exames de sangue frequentes para tripanossomas em animais tratados.

Várias raças de bovinos e búfalos foram identificadas com resistência inata à tripanossomíase e poderiam desempenhar uma importante função na redução do impacto da doença nessas áreas. Contudo, a resistência pode ser perdida devido à má nutrição e à alta exposição às moscas tsé-tsé.

O controle é idealmente atingido pela combinação de métodos para reduzir a exposição à tsé-tsé e pela melhoria da resistência do hospedeiro com medicamentos profiláticos.

A doença de Chagas é endêmica em 21 países da América do Sul, América Central e México, e tem sido relatada com crescente frequência no sul dos Estados Unidos. A doença de Chagas já foi restrita às Américas, mas a migração humana e animal resultou em sua disseminação pela Europa, onde se tornou uma doença emergente na Espanha, Suíça, França, Itália, Alemanha e Inglaterra. A soropositividade em cães em regiões endêmicas pode variar de 5% a 92%. Em algumas regiões, como a Venezuela, a soropositividade em cães é semelhante à de seres humanos, enquanto em outras, como Campeche, no México, a soropositividade pode ser maior em cães do que em seres humanos.

Os insetos triatomíneos noturnos e hematófagos dos gêneros Triatoma, Rhodnius e gênero Panstrongylus servem de vetores para T. cruzi. Os nomes comuns incluem “chupão”, “bicudo”, “baratão”, “percevejo-do-sertão”, “procotó” e “barbeiro”. Existem mais de 130 espécies de triatomíneos nas Américas, e a maioria é considerada vetores competentes. Os insetos se alimentam de sangue infectado, ingerindo tripomastigotas extracelulares do T. cruzi. Essas células se diferenciam no intestino médio em epimastigotas e se dividem. Os epimastigotas migram para o intestino posterior, onde se diferenciam novamente em tripomastigotas metacíclicos. Os tripomastigotas metacíclicos infectantes são liberados nas fezes do inseto.

Em animais insetívoros, como cães, o consumo de insetos infectados ou de materiais contaminados com fezes de triatomíneos infectados é uma das principais formas de transmissão. Notavelmente, o gambá (espécie Didelphis ) é um hospedeiro único para o T. cruzi, pois o parasita pode completar todo o seu ciclo de vida sem a necessidade de um vetor. A maturação do T. cruzi ocorre nas glândulas odoríferas anais, e os tripomastigotas infectantes podem ser eliminados nas fezes ou na urina e ingeridos. Outros métodos de transmissão incluem a transmissão transplacentária, transfusões de sangue e transplantes de órgãos.

Assim que os tripomastigotas metacíclicos entram na corrente sanguínea, eles invadem ativamente muitos tipos de células, saindo do vacúolo parasitóforo e se tornando amastigotas não flagelados. Os amastigotas intracelulares se dividem a cada 15 a 18 horas durante 5 a 6 dias. O T. cruzi se transforma novamente em tripomastigotas e lisa a célula. Os tripomastigotas liberados invadem novas células. O T. cruzi tem tropismo por músculo cardíaco e músculo liso, mas pode ser encontrado em diversos outros tecidos.

A doença de Chagas divide-se nas fases aguda e crônica, sendo a fase crônica subdividida em doença crônica latente e sintomática. O período de incubação varia de 5 a 42 dias antes do aparecimento da fase aguda da doença. As infecções agudas podem ser assintomáticas ou consistir em doença febril inespecífica com cancro no local de entrada do parasita. Os cães também podem apresentar linfadenopatia regional ou generalizada, anorexia, letargia, vômito, diarreia e hepatomegalia ou esplenomegalia. Raramente, é observada miocardite clínica aguda. A parasitemia atinge o pico 2 a 3 semanas após a infecção e desaparece após o primeiro mês, à medida que o organismo passa a ser predominantemente transmitido por tecidos.

A fase latente pode durar meses a anos. Os sintomas da doença crônica podem incluir fraqueza generalizada ou morte súbita. Cães sintomáticos geralmente apresentam insuficiência cardíaca congestiva do lado direito. Isso pode evoluir para miocardite, com arritmias e dilatação cardíaca bilateral. O exame histológico do músculo cardíaco pode revelar pseudocistos não rompidos sem inflamação ou pseudocistos rompidos com inflamação linfocítica, monocítica e/ou neutrofílica. A morte secundária à insuficiência cardíaca é comum.

• Exame direto de esfregaço de sangue

• Teste de anticorpos

O diagnóstico da doença de Chagas pode ser feito pela visualização do organismo, detecção de DNA ou detecção de anticorpos. A parasitemia durante a fase aguda permite a sua detecção por microscopia de um esfregaço de sangue periférico de rotina. Embora as amostras possam ser testadas para o DNA do T. cruzi por PCR ou em cultura, esses testes diagnósticos são incomuns em campo. Em coloração de Giemsa, T. cruzi é um protozoário extracelular em forma de C com um flagelo único.

Os testes de anticorpos são de importância principal durante a fase crônica. Sangue total, plasma ou soro podem ser submetidos. As metodologias de teste são “fita” imunocromatográfica, anticorpo imunofluorescente ou ELISA. Pode ocorrer reação cruzada com anticorpos contra espécies de Leishmania, outro tripanossomatídeo. Devido à reatividade cruzada dos testes sorológicos, recomenda-se a realização de testes com pelo menos duas metodologias ou antígenos diferentes. Além disso, o tecido cardíaco na fase crônica pode ser analisado por PCR para DNA de T. cruzi ou por análise imuno-histoquímica para amastigotas.

• Quimioterápicos

• Controle do vetor

Benznidazol é o medicamento de escolha para o tratamento da doença de Chagas, mas nifurtimox pode também ser usado. Em cães, o benznidazol é administrado na dose de 5 a 10 mg/kg/dia, via oral, durante 2 meses. Nos EUA, ambos os medicamentos não possuem aprovação da FDA e seu uso requer autorização do CDC como parte de protocolos de pesquisa. Recomenda-se também o tratamento sintomático para insuficiência cardíaca e arritmias.

Não existe vacina disponível para a doença de Chagas; portanto, o controle se concentra na prevenção da transmissão da doença. Os métodos de controle de vetores são a aplicação de pesticidas para eliminar os vetores triatomíneos e a redução da atração desses vetores para as residências à noite, desligando a iluminação externa. A reprodução de cadelas positivas é desencorajada. Recomenda-se a triagem de doadores de sangue. Para evitar a transmissão iatrogênica, recomenda-se a desinfecção de superfícies contaminadas com água sanitária a 10% ou etanol a 70%. Insetos mortos infectados podem permanecer como fonte de T. cruzi infectante por até 6 dias a 10 °C ou até 2 meses a 26–30 °C.